Evaluación de la regeneración ósea mediante la utilización de un tejido artificial magnético generado por técnicas de ingenieria tisular
Date
2023Author
Ferrer, María Belén
Alaminos Mingorance, Miguel
Dorado, Guadalupe
Trejo, María José
Rodríguez, Mario Aníbal
Rodríguez, Ismael Ángel
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Introducción: Mediante técnicas de ingeniería tisular nuestro grupo deinvestigación desarrolló un tejido artificial constituído por nanopartículasmagnéticas (TANPM).Objetivo: El objetivo de este trabajo fue evaluar la regeneración ósea mediantela utilización de TANPM en defectos óseos críticos de ratas Wistar que fueronsometidas a campos magnéticos externos.Métodos: Se utilizaron ratas Wistar macho que bajo anestesia se les realizó encalota defectos óseos críticos (DOC) de 5 mm de diámetro. Los gruposexperimentales fueron: DOC sometidos a campos magnéticos estáticos (15mT) rellenos con TANPM (TANPM-CM) y sin relleno (C-CM); DOC nosometidos a campos magnéticos rellenos con TANPM (TANPM-SCM) y sinrelleno (C-SCM). A los 30 días los animales fueron eutanasiados y seprocesaron las muestras mediante descalcificación y técnica de tinciónhistológica de rutina e histoquímicas. Se evaluó y cuantificó el área de tejidoóseo regenerado así como el área total de tejidos en regeneración en DOCutilizando un programa Image J. Los datos se contrastaron estadísticamentemediante ANOVA (p< 0,05).Resultados: El área de tejido óseo regenerado en DOC mostró: TANPM-CM:2,72 ± 0,65 mm2; C-CM: 3,11 ±0,5 mm2; TANPM-SCM: 2,65 ±0,58 mm2; C-SCM:2,19 ±0,52 mm2, sin diferencias significativas entre ellos (p=0,77). El área totalde tejidos en DOC fue: TANPM-CM: 3,41 ±0,47 mm2; C-CM: 3,15 ±0,56 mm2;TANPM-SCM: 3,32 ±0,30 mm2; C-SCM: 2,56 ±0,36 mm2 sin diferenciassignificativas entre ellos (p=0,63). Con tinción picrosirius se observó en DOCla conducción de las fibras de colágeno por TANPM.Conclusión: Los procesos de regeneración ósea podrían verse beneficiados porla aplicación de campos magnéticos externos estáticos. Además, TANPMpermite la obtención de mayor volumen de tejido en regeneración por sucapacidad conductora.Bibliografía:1. Lopez-Lopez MT, Scionti G, Oliveira AC, Duran JDG, Campos A,Alaminos M, et al. Generation and Characterization of Novel Magnetic Field-Responsive Biomaterials. PloS One. 2015;10(7):1-17.2. Campos F, Bonhome-Espinosa AB, Carmona R, Durán JDG, Kuzhir P,Alaminos M, López-López MT, et al. In vivo time-course biocompatibilityassessment of biomagnetic nanoparticles-based biomaterials for tissueengineering applications. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2021Jan;118:111476.3. Rosen AD. Mechanism of action of moderate-intensity static magneticfields on biological systems. Cell Biochem Biophys.2003;39(2):163-73.4. Yu S, Shang P. A review of bioeffects of static magnetic field on rodentmodels. Prog Biophys Mol Biol. 2014 Jan;114(1):14-24.5. Yun H-M, Ahn S-J, Park K-R, Kim M-J, Kim J-J, Jin G-Z, et al. Magneticnanocomposite scaffolds combined with static magnetic field in the stimulationof osteoblastic differentiation and bone formation. Biomaterials. 2016;85:88-98.